静脉可视小鼠尾注固定器 尾静脉注射固定筒架使用方法

静脉可视小鼠尾注固定器 尾静脉注射固定筒架使用方法

ZC-KSG

一、 概述：

我们同行都知道小鼠尾静脉注射是很不容易的事，需要手感、需要练习、需要耐心，实验时，多次打不进去，还会产生一种崩溃的心情。大家一致认为尾注没有任何投机取巧的方法。要想掌握它只有多打、勤练，找感觉，感觉找到了，你就有了自信，这样即便有了自信你也很难做到的把握，追其原因和难点无非有这样三条，一是动物的保定牢固与否，二是鼠尾血管的充盈程度，三是针入血管的去向问题。如果这三条变成了动物保定牢固、血管十分充盈、能看到针尖进入血管与否，那么尾注还有什么难度吗？其实北京哲成科技有限公司研发的静脉可视尾注固定器就是解决了这样三个问题：一、使用了快装鼠筒，装鼠速度快、保定牢固、鼠位舒适，不会前窜，保证了注射时的稳定：二、使用赶压方式将鼠尾尾根部分血管中的血赶压到鼠尾的后半部分，使其血管充分充盈，方便针头的进入。三、使用特殊的黄光照射鼠尾，使鼠尾的血管显现出来，在可视的情况下使针尖的刺入做到有的放矢，不再是单凭手感的盲打，针是否进入血管，摆动针头看血管是否跟着动就知道针是否在血管中，不再追求那种针进血管中的落空感（其实这种手感，一般短时间内很难体会出来）。这三个难点都解决了，以后尾注将不再是难事了，估计再也没有那么多人在网上讨论尾注的事了，人们将*地从尾注的烦恼中解放出来。我们这款尾注固定器就是这样针对这三个难点，经过三年的潜心研究，用新思维、新理念，精心设计制造出来的，这款小型仪器它将用新的原理和新的操作方式让使用者耳目一新。这也将成为鼠尾静脉注射道路上的一个重要里程碑。

主要技术指标：

快装鼠筒可盛装17-40g的小鼠

0.5W LED 黄光灯

五倍放大镜

配带压块释放脚踏开关

电源适配器：输入：AC100-220V   50Hz

输出：DC  12V 2A

整机尺寸：220*140*125cm

整机重量：1.8Kg

使用方法：

一、 连接

①接通电源：将电源适配器分别连接电源和仪器上，接通后主机面板处有绿色指示灯亮。

②连接脚踏开关：将脚踏开关插头插接在主机箱上。

③连接鼠尾透视灯：将L型鼠尾托板上的灯线插头插在主机箱相应的插座上，按动右侧面上的黄色按钮，黄色灯应亮。

二、装鼠

①快速装鼠筒的使用：

快速装鼠筒一改过去那种小鼠钻入式的装鼠方式，（小鼠钻入式的装鼠方式使用还可以，动物在不知的情况下，很容易进入，但动物经过几次后知道进入的不适感觉，再让其进入就较困难了。）快速装鼠筒是后拉尾式装鼠方式，箕型的鼠筒前端能顺利地将鼠拉入筒内，为了避免鼠在筒内滚转身体，筒内安装了腹部限位块，能有效地限制小鼠身体在筒内翻转，小鼠被拉入筒后，可用前堵头将其堵在里面，前堵头的孔是根据小鼠头骨的生理曲线设计的，能有效地控制鼠的头部，但又不影响正常的呼吸，同时还能让小鼠的前肢找到一个舒适的位置，堵头的固定位置应以动物不能自由活动但又不影响动物肺部扩张，正常呼吸为准（通过透明的有机玻璃可观察调整）。

②装好鼠的筒放置于主机上面板的滑槽上，鼠筒应侧放（因静脉血管在鼠尾的两侧），定位销进入定位孔，鼠尾通过开口的档板，将其放置在鼠尾挤压板下板的沟槽里，按动右侧面的黄色按钮，黄色灯亮，观察鼠尾血管是否摆正，再按一下黄色按钮，关闭黄灯，随后将挤压上板右转 90°压下，直到听到清脆的吸合声才可松手，此时鼠尾已被压住，按压时应缓慢加力，为让鼠尾根部的血液，有时间挤压到鼠尾的梢部，在下压的同时黄光灯自动点亮，这时可以根据黄光透射血管的情况调整黄光亮度旋钮，使血管达到zui清楚（环境的亮度变化会影响血管的显现情况，建议在较暗的室内操作，应避开强光直射）。

③注射位置的调整：不管使用多大的小鼠均应从鼠尾部的下1／3处进针，这样逐渐从下向上打可避开打过的针眼出现漏液现象。因使用动物的品系、大小不同，尾长度也不同，这样就需要调整注射时的位置，其方法是松开左边金属旋钮，拉动L型鼠尾托板至合适位置后旋紧即可。

④放大镜的使用：放大镜是为了能更清楚地看到尾静脉血管和针头进入的情况（如视力很好也可拆掉不用），放大镜能进行角度位置的调整，可以适合不同视角的人，放大镜支架的上螺丝松开后可以改变放大镜的角度，松开下螺丝可以改变入视角的角度，支架转动的中轴可以在装鼠时放大镜暂时离开，总之放大镜的合理设计既方便了使用又不会影响到其它操作。

⑤注射：注射使用的针头应在5号针以下，4.5或4号较为合适，过粗的针对血管损伤过大，用后止血困难。目前也有用头皮针后接1毫升注射器用的。这还是为了看回血情况来判断是否进入血管，不管用什么样的针，重要的一点是能看到血管，同时又能看到针在哪里了，这样注射就很容易了，针头进入血管后针头左右摆动一下看血管是否跟着动，这是判断进入血管的方法。

确定针进入血管后，踏动脚踏开关，上挤压板上行左转90°打开，这时就可以将药物推入静脉，推入时应缓慢，避免动物出现充血性心衰，每次注射量不超过0.2ml。注射完成后应用棉球按压针孔处半分钟以上，避免皮下出血或药液回流，影响下次注射，备用鼠筒是为了提率轮换使用的。（如果动物样本大也可多购鼠筒）

注意事项

① 动物在被装筒捉持时会有应激反应，粪尿过多，应及时清理上板面和鼠筒内的粪便。

②仪器不用时应及时拔掉电源，避免仪器过热损坏。

仪器不可随意拆卸，如有问题请及时与厂家。